雙報(bào)告基因用于實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)中作相關(guān)的或成比例的檢測，通常一個(gè)報(bào)告基因作為內(nèi)對照，使另一個(gè)報(bào)告基因的檢測均一化。檢測基因表達(dá)時(shí)雙報(bào)告基因通常用來瞬時(shí)轉(zhuǎn)染培養(yǎng)細(xì)胞，帶有實(shí)驗(yàn)報(bào)告基因的載體共轉(zhuǎn)染帶有不同的報(bào)告基因作為對照的第二個(gè)載體。通常實(shí)驗(yàn)報(bào)告基因偶聯(lián)到調(diào)控的啟動子，研究調(diào)控基因的結(jié)構(gòu)和生理基礎(chǔ)。報(bào)告基因表達(dá)活力的相對改變與偶聯(lián)調(diào)控啟動子轉(zhuǎn)錄活力的改變相關(guān)，偶聯(lián)到組成型啟動子的第二個(gè)報(bào)告基因，提供轉(zhuǎn)錄活力的內(nèi)對照， 使測試不被實(shí)驗(yàn)條件變化所干擾。通過這種方法，可減少內(nèi)在的變化因素所削弱的實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)確性，比如，培養(yǎng)細(xì)胞的數(shù)目和活力的差別，細(xì)胞轉(zhuǎn)染和裂解的效率。

              使用螢火蟲熒光素酶，結(jié)合氯霉素乙酰轉(zhuǎn)移酶（CAT），β-半乳糖苷酶（β-Gal），或葡萄醛酸糖苷酶（GUS）的雙報(bào)告基因，近幾年已普遍使用。但這些雙報(bào)告基因組合削弱了熒光 素酶操作的優(yōu)勢 , 比如熒光素酶測試和定量可在幾秒鐘內(nèi)進(jìn)行， 但CAT，β-Gal和GUS測試法，則在定量前需要長時(shí)間的保溫。另外，這些報(bào)告基因受限于它們的靈敏度和線性應(yīng)答范圍，必須注意不要超過這些范圍，內(nèi)源性細(xì)胞活力也會干擾這類報(bào)告基因的使用。許多類型的細(xì)胞有內(nèi)源β-Gal或GUS表達(dá)，不利于準(zhǔn)確定量報(bào)告基因表達(dá)，胞內(nèi)去乙酰酶活力干擾CAT活力測試。盡管在高溫下預(yù)處理細(xì)胞裂解液，會降低內(nèi)源性β-Gal和CAT測試的干擾，但這些處理也會快速失活熒光素酶。因此，在此類雙報(bào)告基因檢測中， 必須以不同的步驟分別處理共轉(zhuǎn)染的細(xì)胞裂解液。

           理想的雙報(bào)告基因方法應(yīng)該使用戶能夠以螢火蟲熒光素酶所具有的速度，靈敏和線性范圍對同一樣品中的兩個(gè)報(bào)告基因同時(shí)測定。這在傳統(tǒng)的報(bào)告基因，如CAT，β-Gal和GUS是不可能的，由于它們測試化學(xué)，處理要求所固有的局限。相反，結(jié)合螢火蟲 （ Photinus pyralis ）和海洋腔腸 （ Renilla reniformis ） 雙熒光素酶，Promega 的雙熒光素酶報(bào)告基因測試 （DLR）系統(tǒng)可滿足這些要求，在單管中完成這些測試。