蛋白質(zhì)純化離子交換法
 
 
    儀器設(shè)備：
    塑料管柱 (Bio-Rad Econo-Pac column 732-1010, 1.5×12 cm)
    分劃收集器 (fraction collector, 另需準(zhǔn)備干凈試管約60 支)
    濃縮用離心機(jī) (低速5,000 rpm) 及濃縮離心管Centriplus
 
    藥品試劑：
    DEAE Sephacel (膠體體積約15 mL，預(yù)先以緩沖液Buffer A-0 平衡好)
    Buffer A-0 (如上述配法)
    Buffer A-300 溶離液：Buffer A-0 加有0.3 M NaCl
    Buffer A-500 溶離液：Buffer A-0 加有0.5 M NaCl
 
    方法步驟：
    1) 將Econo-Pac 管柱架好，并將三向閥及軟管等組合完成。
    2) 震蕩DEAE Sephacel 膠體使的懸浮，小心倒入管柱中，讓膠體慢慢沈降，在沈降過(guò)程中隨時(shí)加入buffer A-0，勿使膠體干掉。
    3) 待膠體沈降*后，高度應(yīng)在15 cm 左右。膠柱以buffer A-0 一直流洗，流速快慢可以不考慮；連接好收集器，每試管收2.5 mL。離子交換法的膠體平衡極為重要，可測(cè)流出液的pH 或離子濃度，看是否與buffer A-0 相同，若不一樣則需要再流洗的。
    4) 樣本的添加方法同上述膠體過(guò)濾法，并啟動(dòng)分劃收集器開(kāi)始收集，當(dāng)樣本全部沒(méi)入膠體后，再加入同體積buffer A-0。以buffer A-0 流洗50 mL 后，去除膠體上方的緩沖液，但勿使膠體干掉。
    5) 然后依序以buffer A-300, buffer A-500 溶離的，每批次流洗各50 mL，注意更換濃度時(shí)，膠體上方勿殘存上一種溶液。
    6) 收集所有分劃，進(jìn)行蛋白質(zhì)定量分析以及GUS 活性測(cè)定，結(jié)果作圖。
    7) 收集GUS 活性區(qū)，并以Centriprep-30 濃縮至 _______ mL (IEX)，記得要保留100 μL。
    8) 離子交換膠體以buffer A-0 洗過(guò)50 mL 后，收起來(lái)交回。