(一) 原理
蛋白質(zhì)在水溶液中的溶解度是由蛋白質(zhì)周圍親水基團(tuán)與水形成水化膜的程度,以及蛋白質(zhì)分子帶有電荷的情況決定的。當(dāng)用中性鹽加入蛋白質(zhì)溶液,中性鹽對(duì)水分子的親和力大于蛋白質(zhì),于是蛋白質(zhì)分子周圍的水化膜層減弱乃至消失。同時(shí),中性鹽加入蛋白質(zhì)溶液后,由于離子強(qiáng)度發(fā)生改變,蛋白質(zhì)表面電荷大量被中和,更加導(dǎo)致蛋白溶解度降低,使蛋白質(zhì)分子之間聚集而沉淀。
(二) 主要材料
1. 試劑:
(1) 正常人混合血清;滅菌生理鹽水。
(2) 飽和硫 酸銨溶液的配制:
稱(NH4)2SO4(AR)400~425克,以50~80℃之蒸餾水500ml溶解,攪拌20分鐘,趁熱過(guò)濾。冷卻后以濃氨水(15N NH4OH)調(diào)PH至7.4。配制好的飽和硫 酸銨,瓶底應(yīng)有結(jié)晶析出。
(3) 萘氏試劑配制:
稱HgI11.5克,KI8克,加蒸餾水至50ml,攪拌溶解后,再加入20%NaOH 50ml。
(4) 0.02M, PH7.4磷酸鹽緩沖鹽液(Phosphate Buffered Saline PBS)配制:
貯存液:
A液:0.2M Na2HPO4:Na2HPO4·12H2O 71.64克,加蒸餾水至1000ml;
B液: 0.2M NaH2P4:NaH2P4·2H2O 3.12克,加蒸餾水至1000ml;
應(yīng)用液:取A液81ml加B液19ml混合,再以生理鹽水作10倍稀釋即成。
(5) 0.1M, PH7.4磷酸鹽緩沖液(Phosphate Buffer PB)配制:
將上述A液取81ml與B液19ml混合,再以蒸餾水對(duì)倍稀釋即成。
(6) 20%磺基水楊酸。
2. 器材:
普通冰箱、離心機(jī)、電磁攪拌器,751桮型紫外分光光度計(jì)、扭力天平,粗天平。
透析袋、尼龍繩、細(xì)竹棒、精密PH試紙(PH5.5~9.0)、眼科鑷子、小剪刀。
燒杯、量筒、吸管、滴管、滅菌小瓶、試管等。
(三) 鹽析的操作步驟
取正常人混合血清加等量生理鹽水,于攪拌下逐滴加入與
稀釋血清等量的飽和硫 酸銨[終濃度為50%飽和(NH4)2SO4]
↓4℃,3小時(shí)以上,使其充分沉淀
離心(3000rpm), 20分鐘,棄上清,以生理鹽水溶解沉淀至Xml。
再逐滴加飽和硫 酸銨X/2ml
↓置4℃,3小時(shí)以上[此時(shí)(NH4)2SO4的飽和度為33%)]
重復(fù)上述第二步過(guò)程1?次。將末次離心后所得沉淀物以0.02M
PH7.4 PBS溶解至Xml裝入透析袋。
│對(duì)PBS充分透析、除鹽換液3次,
↓至萘氏試劑測(cè)透析外液為無(wú)黃色
將透析袋內(nèi)樣品取少許作適當(dāng)倍數(shù)稀釋后,以751-G紫外分光光計(jì)測(cè)蛋白含量。
方法如下:
蛋白含量(mg/ml)=(1.45×OD280nm-0.74×OD260nm)×樣品稀釋度。
注:式中1.45與0.74為常數(shù),nm為波長(zhǎng)。
(四) 影響鹽析的因素
1. 蛋白質(zhì)的濃度:鹽析時(shí),溶液中蛋白質(zhì)的濃度對(duì)沉淀有雙重影響,既可影響蛋白質(zhì)沉淀極限,又可影響蛋白質(zhì)的共沉作用。蛋白質(zhì)濃度愈高,所需鹽的飽和度極限愈低,但雜蛋白的共沉作用也隨之增加,從而影響蛋白質(zhì)的純化。故常將血清以生理鹽水作對(duì)倍稀釋后再鹽析。
2. 離子強(qiáng)度:各種蛋白質(zhì)的沉淀要求不同的離子強(qiáng)度。例如當(dāng)硫 酸銨飽和度不同,析出的成分就不同,飽和度為50%時(shí),少量白蛋白及大多數(shù)擬球蛋白析出;飽和度為33%時(shí)γ球蛋白析出。
3. 鹽的性質(zhì):zui有效的鹽是多電荷陰離子。
4. PH值:一般說(shuō)來(lái),蛋白質(zhì)所帶凈電荷越多,它的溶解度越大。改變PH改變蛋白質(zhì)的帶電性質(zhì),也就改變了蛋白質(zhì)的溶解度。
5. 溫度:鹽析時(shí)溫度要求并不嚴(yán)格,一般可在室溫下操作。血清蛋白于25℃時(shí)較0℃更易析出。但對(duì)溫度敏感的蛋白質(zhì),則應(yīng)于低溫下鹽析。
6. 蛋白質(zhì)沉淀后宜在4℃放3小時(shí)以上或過(guò)夜,以形成較大沉淀而易于分離。