產(chǎn)品名稱：改良Lowry法蛋白定量試劑盒
規(guī)格：500T/1000T
分類：蛋白檢測(cè)
儲(chǔ)存條件：室溫,避光，12個(gè)月
用途：微板法,改良Lowry法定量檢測(cè)蛋白濃度
注意事項(xiàng)：利用蛋白中肽鍵與銅離子結(jié)合成四配位基銅離子復(fù)合物,后者與Folin試劑(福林酚)反應(yīng),產(chǎn)生藍(lán)色比色物,用分光光度法(酶標(biāo)儀或分光光度計(jì))檢測(cè)750nm處吸光度

簡(jiǎn)介：
目前世界上zui常用的蛋白濃度檢測(cè)方法是：BCA蛋白定量試劑盒(BCA Protein Assay Kit)和Bradford蛋白定量試劑盒(Bradford Protein Assay Kit)。改良Lowry法蛋白定量試劑盒是利用蛋白中肽鍵與銅離子結(jié)合成四配位基銅離子復(fù)合物，后者與Folin試劑(福林酚)反應(yīng)，產(chǎn)生藍(lán)色比色物，用分光光度法(酶標(biāo)儀或分光光度計(jì)）檢測(cè)750nm處吸光度，并與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較，求得待測(cè)蛋白樣品的濃度。在1~1500ug/ml濃度范圍內(nèi)有較好的線性關(guān)系。

操作步驟：
一、準(zhǔn)備工作
1．制備溶液A：將16mL溶液A成分二和16mL溶液A成分三加入到裝溶液A成分一的塑料瓶中，混合均勻得到240mL溶液A。注意：溶液A各成分分開(kāi)提供更加穩(wěn)定。
2．制備Lowry工作液：將溶液A、溶液B和溶液C按3：1：1的體積比混合得到Lowry工作液。此工作液可以室溫放置2-3周，所以最好用多少配多少。如果發(fā)現(xiàn)溶液B或溶液C有沉淀，需37℃溶解并搖勻后再使用。
3．制備福林酚工作液：在裝有10mL福林酚的棕色塑料瓶中加入90mL去離子水，搖晃混勻待用。此工作液在避光條件下可以放置6個(gè)月。

二、試管法
4．先用去離子水將BSA標(biāo)準(zhǔn)(2mg/mL)稀釋到50μg/mL，然后在標(biāo)記的試管中加入下列成分(單位：μL)。注意：每個(gè)樣品最好做三個(gè)稀釋度，每個(gè)稀釋度最好設(shè)置三次重復(fù)，陰性對(duì)照和標(biāo)準(zhǔn)品也最好做三次重復(fù)。
5．每管中加入200μl Lowry工作液，振蕩混勻后室溫反應(yīng)10分鐘。
6．每管中加入100μl福林酚工作液，振蕩混勻后室溫反應(yīng)30分鐘。
7．用容量為0.5mL、光徑為1cm的玻璃比色杯或聚苯乙烯比色杯測(cè)定750nm的光吸收。測(cè)定時(shí)，先空白(即陰性對(duì)照)后樣品，測(cè)定樣品和BSA標(biāo)準(zhǔn)品時(shí)，先低濃度后高濃度。測(cè)定未知樣品前需要將杯子清洗干凈，必要時(shí)可以用甲醇清洗吸附到比色杯壁上的染料。
8．根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品三個(gè)重復(fù)的平均值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，然后根據(jù)未知樣品的光吸收從標(biāo)準(zhǔn)曲線中查得其對(duì)應(yīng)的濃度。

三、96微孔板法
9．同上，只是反應(yīng)用96微孔板設(shè)置，用酶標(biāo)測(cè)試儀750nm測(cè)定光吸收。
四、樣品中干擾物質(zhì)的去除(本產(chǎn)品不含相關(guān)產(chǎn)品，如果樣品中有干擾Lowry法蛋白定量的物質(zhì)，可另購(gòu)本公司的微量蛋白質(zhì)沉淀試劑盒去除，也可以用自備試劑按下法去除：用水將樣品調(diào)到體積為200μl，加入20μl 0.15%去氧膽酸鈉，混勻，室溫放置10分鐘。加入20μL 72%的TCA，室溫放置5分鐘。3000g離心15分鐘，小心去除上清。用200μl水溶解蛋白沉淀后以用于Lowry法測(cè)定。
附：常見(jiàn)Lowry法蛋白定量干擾物(低于所列濃度不干擾，高于所列濃度則會(huì)干擾，需要按上法去除。不能含任何濃度的DTE，DTT和硫酸胺)。

疑難解答：
1.該方法檢測(cè)的蛋白質(zhì)濃度范圍1μg～50μg/ml。
2.由于Lowry法測(cè)定的是蛋白質(zhì)中酪an酸殘基，對(duì)于那些酪an酸殘基數(shù)高于或低于BSA，其測(cè)定的蛋白質(zhì)含量將偏低或偏高。如果遇到該情況，需要采用BCA或Bradford法測(cè)定。
3.閱讀測(cè)定方法后化學(xué)試劑對(duì)測(cè)定方法的影響。