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當(dāng)前位置:上海士鋒生物科技有限公司>>技術(shù)文章>>PCR操作范例及反應(yīng)體系的組成
CR反應(yīng)條件不能產(chǎn)生所需的特異性產(chǎn)物,可采用新的寡核苷酸重新進(jìn) 行擴(kuò)增,或用凝膠電泳來(lái)分離不同的PCR產(chǎn)物,而后再各自重新擴(kuò)增進(jìn)行序列分析。 長(zhǎng)度不同的片段可以用瓊脂糖凝膠電泳來(lái)分離:
1.片段大小在80-100bp時(shí),可采用3%NuSieve1%普通瓊脂糖或用聚丙烯酰胺膠來(lái) 分離?!?/EM>
2.從膠上切下含所南非PCR片段的薄片。
3.加入50∽100μlTE浸泡膠片,可反復(fù)凍融或放置幾個(gè)小時(shí)使DNA從膠中擴(kuò)散出 來(lái)。
4.取少量(1-5%)進(jìn)行第二次擴(kuò)增,為得到純凈單一的產(chǎn)物,用于第二次PCR擴(kuò)增 的凝膠抽提物的量必須少于1ng。
5.現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)瓊脂糖含有抑制Tab聚合酶活的物質(zhì)。因而,如需重新擴(kuò)增供Tab聚合 酶測(cè)序用的片段,用丙烯酰胺電泳分離。
當(dāng)用PCR引物擴(kuò)增幾個(gè)同樣長(zhǎng)度的相關(guān)序列時(shí),如來(lái)自幾個(gè)新近復(fù)制的基因,或 重復(fù)序列或保守的信號(hào)序列(conserved signal sequences)的同樣顯子,可以通過(guò)下 列兩種不同方法來(lái)改進(jìn)電泳分離。1).先用只切割某一模板的內(nèi)切酶進(jìn)行酶切,而后 電泳純化完整的PCR產(chǎn)物。2).用可使核苷酸序列不同的擴(kuò)增產(chǎn)物分開(kāi)的電泳系統(tǒng)。下 一個(gè)部份將討論此類(lèi)系統(tǒng)中的變性甲酰胺梯度凝膠系統(tǒng)。采用方法一時(shí),必須事先了 解在不同PCR產(chǎn)物中的內(nèi)切酶位點(diǎn)。
雜合體的直接測(cè)序
當(dāng)兩個(gè)等位基因由于單一位點(diǎn)突變而產(chǎn)生差異時(shí),用一個(gè)PCR引物直接進(jìn)行測(cè) 序,能找出雜合位點(diǎn)。但是,帶有幾個(gè)點(diǎn)突變或短片段的插入/缺失的等位模板用PC R引物之一來(lái)直接測(cè)序,將產(chǎn)生復(fù)合序列帶(compound sequencing ladders)。有四種 方法可以確定幾種點(diǎn)突在型并從雜合體中獲得單個(gè)等位基因的序列:1).克隆分離不同 的模板;2).在測(cè)序之前,利用模板之間核苷酸序列的差異,用電泳技術(shù)分離不同的模 板;3).在測(cè)序反應(yīng)中只啟動(dòng)一個(gè)等位基因;4).只擴(kuò)增一個(gè)等位基因。
測(cè)序模板的制備
與PCR產(chǎn)物的直接測(cè)序有關(guān)的一些問(wèn)題是變性后由于擴(kuò)增片段的兩條鏈可以迅速 結(jié)合起來(lái),從而阻止了測(cè)序引物與它的互補(bǔ)序列退火,或阻止了引物──模板復(fù)合物 的延伸。在測(cè)序反應(yīng)中,模板鏈重新結(jié)合使一小部份模析驂與測(cè)序從而弱化zui終的測(cè) 序條帶。為減少此問(wèn)題,可用改進(jìn)的標(biāo)準(zhǔn)雙鏈DNA測(cè)序法或用PCR制備單鏈模板。
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