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技術(shù)文章

細(xì)胞培養(yǎng)的步驟

閱讀:539發(fā)布時(shí)間:2016-6-3

ELISA試劑盒細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)也叫細(xì)胞克隆技術(shù),在生物學(xué)中的正規(guī)名詞為細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)?,F(xiàn)代生物技術(shù)一般認(rèn)為包括基因工程技術(shù)、細(xì)胞工程技術(shù)、酶工程技術(shù)和發(fā)酵工程技術(shù),而這些技術(shù)的發(fā)展幾乎都與細(xì)胞培養(yǎng)有密切關(guān)系,特別是在醫(yī)藥領(lǐng)域的發(fā)展,細(xì)胞培養(yǎng)更具有特殊的作用和價(jià)值。以下來(lái)具體講一下細(xì)胞培養(yǎng)的步驟。

    一、細(xì)胞復(fù)蘇:

    1. 將新鮮培養(yǎng)基置于37℃水浴鍋中回溫,回溫后噴以75%酒精并擦拭之,移入無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)。如配置:50mL*培養(yǎng)基(含10%FBS,1%青*雙抗)44.5mL基礎(chǔ)培養(yǎng)基 + 5mL FBS + 0.5mL青*雙抗。
    2. 戴防護(hù)手套后,自液氮罐中取出冷凍管,檢查蓋子是否旋緊,立即放入37℃水槽中快速解凍(避免冰晶重新結(jié)晶而造成細(xì)胞死亡),輕搖冷凍管使其在2分鐘內(nèi)全部融化,以75%酒精擦拭保存管外部,移入無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)。
    3. 將解凍的1mL細(xì)胞懸液緩緩加入細(xì)胞培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),再向瓶中加入10mL*培養(yǎng)基(稀釋比例為1:10),混合均勻,放入37℃,5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取0.1ml解凍細(xì)胞懸液作存活測(cè)試。(Sf9細(xì)胞在27℃生長(zhǎng),可不需CO2)
    4. 一般而言,細(xì)胞大都不需立即去除冷凍保護(hù)劑(例如DMSO)。若要立即去除,則將解凍的細(xì)胞懸液加入含有5-10ml培養(yǎng)基之離心管內(nèi),離心1300rpm,5分鐘,移去上清液,加入新鮮培養(yǎng)基,混合均勻,放入CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。若不需立即去除冷凍保存劑,則在解凍培養(yǎng)后隔日更換培養(yǎng)基。

 二、細(xì)胞凍存:
    1. 冷凍前確保細(xì)胞處于指數(shù)生長(zhǎng)期,傳代后的5mL細(xì)胞懸液取出1mL接種到培養(yǎng)瓶繼續(xù)傳代。另取一無(wú)菌離心管,將剩余4mL細(xì)胞懸液置于其中,離心1000rpm,5min(轉(zhuǎn)速勿超過(guò)1500rpm)。
    2. 離心后倒掉上層清液,收集下層細(xì)胞沉淀。向離心管中加入900ul*培養(yǎng)基,用槍頭反復(fù)吹打重懸起細(xì)胞。取少量細(xì)胞懸液計(jì)數(shù)細(xì)胞濃度及凍前存活率。一般細(xì)胞濃度為2~5×106cells/ml較適宜。
    3. 將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)入1.5mL無(wú)菌凍存管中,再加入100ul試劑級(jí)DMSO,混勻,制成細(xì)胞凍存懸液(DMSOzui后濃度為10%)。嚴(yán)密封口后,注明細(xì)胞名稱、代數(shù)、日期,然后進(jìn)行凍存。
    注意:對(duì)Sf9細(xì)胞而言,凍存比例為:95%培養(yǎng)液+5%DMSO。
    5. 傳統(tǒng)方法:冷存管置于4℃10分鐘→-20℃30分鐘→-80℃16~18小時(shí)(隔夜)→液氮罐長(zhǎng)期儲(chǔ)存。(-20℃勿超過(guò)1小時(shí),防止胞內(nèi)冰晶過(guò)大造成細(xì)胞死亡)

DGAT2    甘油二酯?;D(zhuǎn)移酶2抗體
DHX15    DHX15蛋白抗體
DIAPH2    DIAPH2蛋白抗體
phospho-Dishevelled 2 (Ser143)    磷酸化蓬亂蛋白2抗體
DKK2    Wnt通路抑制因子2抗體
phospho-DAPP1 (Tyr139)    磷酸化B淋巴細(xì)胞銜接分子DAPP1抗體
phospho-DAXX (Ser668)    磷酸化Fas相關(guān)死亡結(jié)構(gòu)域蛋白抗體
DBPA    冷休克蛋白DBPA抗體
DCP1A    脫帽酶1A抗體
DCPS    清道夫脫帽酶/熱休克蛋白1抗體

ELISA試劑盒

 


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