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古朵知識(shí)點(diǎn)分享| 瓊脂糖凝膠電泳錯(cuò)誤
1. 使用水代替凝膠緩沖液或電泳緩沖液
瓊脂糖凝膠配制和電泳通常使用TAE或TBE緩沖液進(jìn)行。 如果您使用水進(jìn)行凝膠配制和跑電泳,您的凝膠將在電泳時(shí)很快融化。 TAE、TBE和水都是透明的溶液;因此,在配制時(shí)請(qǐng)檢查容器的標(biāo)簽。
2. 使用了錯(cuò)誤濃度的瓊脂糖
DNA凝膠電泳所需的標(biāo)準(zhǔn)瓊脂糖濃度為1.0%。濃度越高,小條帶的分辨率越高;反之,瓊脂糖濃度越低,大分子量條帶的分辨率和分離程度越高。 如果使用了錯(cuò)誤濃度的瓊脂糖凝膠,就很難確定DNA條帶的可靠性。 當(dāng)使用低百分比濃度瓊脂糖凝膠時(shí)要小心;它們往往較軟,更容易破損。
3. 顛倒了電泳槽與電源連接線的方向
這是很容易犯的錯(cuò)誤,但是如果你不小心顛倒了電泳槽與電源連接線的方向,結(jié)果將會(huì)非常令人沮喪。 因?yàn)闃颖緯?huì)向相反方向移動(dòng),而且由于上樣孔與凝膠的末端很近,您會(huì)丟失所有的樣本。 開(kāi)始您的電泳后確保DNA樣本以正確的方向進(jìn)入凝膠;如果您看到您的條帶向錯(cuò)誤的方向移動(dòng),請(qǐng)顛倒電源線的方向。
瓊脂糖凝膠中實(shí)現(xiàn)更高分辨率的5種方法
1. 什么是適合于您的瓊脂糖凝膠電泳的正確緩沖液?
進(jìn)行DNA瓊脂糖凝膠電泳所需的緩沖液類(lèi)型,主要取決于DNA片段大小和電泳后的應(yīng)用。 進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳最常見(jiàn)的兩種緩沖液是Tris-乙酸EDTA緩沖液(TAE)和Tris-硼酸EDTA緩沖液(TBE)。 因?yàn)閮煞N緩沖液的pH值都接近中性,所以緩沖液中的DNA都帶凈負(fù)電荷并向凝膠裝置正極(+)方向移動(dòng)。
對(duì)于小片段DNA (<1000 bp),如果沒(méi)有計(jì)劃從凝膠中回收DNA,那么推薦使用1x TBE緩沖液。 TBE溶液具有高離子強(qiáng)度和緩沖能力。 TAE緩沖液,結(jié)合低電場(chǎng)強(qiáng)度(1–2 V/cm),分離大DNA(12–15 kb)。 TAE緩沖液與瓊脂糖相互作用,相比較TBE緩沖液中的瓊脂糖凝膠,會(huì)產(chǎn)生更低的電滲透,更大的表面孔經(jīng),和更低的電場(chǎng)強(qiáng)度,可降低大DNA的smear現(xiàn)象。
2. 為了獲得辨率您需要的DNA上樣量是多少?
DNA樣本量可以是各種各樣的,關(guān)鍵是您正在分離的DNA條帶的DNA含量。 最小可能被檢測(cè)的DNA的量依賴(lài)于所使用的染色方法(例如,使用SYBR Safe DNA凝膠染色可以檢測(cè)出 3 ng的DNA。 一個(gè)清晰且界限分明的條帶中DNA最大量為100 ng。
3. 凝膠配制如何影響條帶分辨率?
推薦的瓊脂糖凝膠厚度為3-4 mm;厚度超過(guò)5mm的凝膠會(huì)產(chǎn)生模糊的條帶和更高的染色背景。與此類(lèi)似,覆蓋在電泳裝置中凝膠上的電泳緩沖液厚度為3-5mm。 緩沖液太多會(huì)降低DNA遷移率并造成條帶變形。
梳齒的厚度也很重要,它會(huì)顯著影響分辨率。 薄梳(1 mm)會(huì)給出界限清晰的條帶,而厚梳會(huì)產(chǎn)生厚條帶,導(dǎo)致分辨率降低。 梳齒應(yīng)充分清洗以去掉可能的殘留物,否則可能會(huì)在泳道內(nèi)產(chǎn)生波浪線。 此外,在去除梳齒前要先加入緩沖液,以減少瓊脂糖孔附近的撕裂。
4. 凝膠類(lèi)型影響條帶分辨率嗎?
根據(jù)DNA的應(yīng)用和大小,瓊脂糖類(lèi)型會(huì)影響DNA分辨率。 凝膠強(qiáng)度,凝膠融解溫度,和電滲透是選擇合適瓊脂糖時(shí)的重要因素。
5. 您如何選擇瓊脂糖凝膠電泳運(yùn)行環(huán)境?
推薦的凝膠電泳裝置內(nèi)的電壓是4–10 V/cm(正極和負(fù)極之間的距離,不是凝膠長(zhǎng)度)。 如果電壓太低,遷移率會(huì)降低,而且條帶會(huì)因擴(kuò)散而變寬。 如果電壓太高,條帶分辨率會(huì)降低,這主要是由于凝膠過(guò)熱引起的。
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